Schmeißfliegen

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Kalliphoridae
Chrysomya megacephala male.jpg
Männchen Chrysomya megacephala
Wissenschaftliche Klassifizierung e
Königreich: Tierreich (Animalia)
Stamm: Gliederfüßer
Klasse: Insekten (Insecta)
Ordnung: Zweiflügler (Diptera)
Überfamilie: Oestroidea
Familie: Kalliphoridae
Brauer & Bergenstamm, 1889
Unterfamilien
  • Bengaliinae
  • Calliphorinae
  • Chrysomyinae
  • Helicoboscinae
  • Luciliinae
  • Melanomyinae

Die Calliphoridae (allgemein bekannt als Schmeißfliegen, Schmeißfliegen, Aasfliegen, Schmeißfliegen, Schmeißfliegen oder Traubenfliegen) sind eine Insektenfamilie in der Ordnung Diptera mit fast 1 900 bekannten Arten. Die Madenlarven, die oft als Angelköder verwendet werden, sind als Gentles bekannt. Es ist bekannt, dass die Familie polyphyletisch ist, doch ist die richtige Behandlung der einzelnen Taxa umstritten, von denen einige gelegentlich den Status einer Familie erhalten (z. B. Bengaliidae und Helicoboscidae).

Der Name Schmeißfliege stammt von einer älteren englischen Bezeichnung für Fleisch, auf das Eier gelegt worden waren und das als "fly blown" bezeichnet wurde. Die erste bekannte Assoziation des Begriffs "blow" mit Fliegen findet sich in den Stücken von William Shakespeare: Love's Labour's Lost, The Tempest und Antony and Cleopatra.

Der Name Schmeißfliege beschreibt die Vorliebe dieser Insekten für geruchsintensive organische Stoffe. Im Althochdeutschen bedeutet schmeißen beschmieren, bestreichen, besudeln.

Der kompakte Körper dieser Fliegen ist meist metallisch blau oder grün bis goldgrün glänzend gefärbt. Augen und Flügel sind sehr gut ausgebildet, als Mundwerkzeuge besitzen sie einen Leckrüssel.

Beschreibung

Merkmale

Die erwachsenen Calliphoridae sind in der Regel glänzend und metallisch gefärbt, oft mit blauem, grünem oder schwarzem Thorax und Hinterleib. Die Antennen sind dreiteilig und aristatisch. Die Aristiden sind auf ihrer gesamten Länge gefiedert, und das zweite Antennensegment ist deutlich gerillt. Die Mitglieder der Calliphoridae haben verzweigte Rs 2-Adern, Stirnnähte sind vorhanden, und die Calypter sind gut entwickelt.

Die Merkmale und Anordnungen der haarähnlichen Borsten dienen zur Unterscheidung der Mitglieder dieser Familie. Alle Schmeißfliegen haben Borsten, die sich auf dem Meron befinden. Zwei Notopleuralborsten und eine hintere Posthumeralborste, die sich seitlich der Presuturalborste befindet, sind Merkmale, nach denen man bei der Identifizierung dieser Familie suchen sollte.

Der Thorax weist eine durchgehende Dorsalnaht in der Mitte auf, zusammen mit gut ausgeprägten hinteren Schwielen. Das Postskutellum ist nicht oder nur schwach entwickelt. Die Costa ist ungebrochen und die Subcosta ist auf dem Insekt erkennbar.

Entwicklung

Die meisten bisher untersuchten Schmeißfliegenarten sind anautogen, d. h. die Weibchen benötigen eine beträchtliche Menge an Eiweiß, um reife Eier in ihren Eierstöcken zu entwickeln (etwa 800 µg pro Paar Eierstöcke bei Phormia regina). Die derzeitige Theorie besagt, dass die Weibchen Aas sowohl zur Eiweißgewinnung als auch zur Eiablage aufsuchen, was jedoch noch nicht bewiesen ist. Die meist gelblichen oder weißen Eier der Schmeißfliege sind etwa 1,5 mm × 0,4 mm groß und sehen nach der Ablage wie Reiskörner aus. Die weibliche Schmeißfliege legt in der Regel 150-200 Eier pro Partie, ist aber in der Regel wechselgeschlechtlich und legt im Laufe ihres Lebens etwa 2.000 Eier. Das Geschlechterverhältnis der Schmeißfliegeneier ist in der Regel 50:50, eine Ausnahme bilden die Weibchen zweier Arten der Gattung Chrysomya (C. rufifacies und C. albiceps), die entweder arrhenogen (sie legen nur männliche Nachkommen) oder thelygen (sie legen nur weibliche Nachkommen) sind.

Der Schlupf aus dem Ei bis zum ersten Larvenstadium dauert etwa 8 Stunden bis einen Tag. Die Larven durchlaufen drei Entwicklungsstadien (Instanzen), die jeweils durch eine Häutung voneinander getrennt sind. Die einzelnen Stadien lassen sich anhand der hinteren Spirakel (Öffnungen zum Atmungssystem) unterscheiden. Die Larven verwenden proteolytische Enzyme in ihren Ausscheidungen (sowie mechanische Zerkleinerung durch Mundhaken), um die Proteine des Viehs oder des Kadavers, von dem sie sich ernähren, abzubauen. Schmeißfliegen sind poikilotherm, d. h. die Geschwindigkeit, mit der sie wachsen und sich entwickeln, hängt stark von der Temperatur und der Art ab. Bei Zimmertemperatur (etwa 20 °C) kann sich die Schwarze Schmeißfliege Phormia regina innerhalb von 150-266 Stunden (sechs bis 11 Tagen) vom Ei zur Puppe entwickeln. Wenn das dritte Larvenstadium abgeschlossen ist, verlässt sie den Kadaver und verpuppt sich im Boden, wo sie 7-14 Tage später als Erwachsene schlüpft.

Nahrungsquellen

Ausgewachsene Schmeißfliegen sind gelegentliche Bestäuber, die von Blumen mit starkem Geruch, der an verrottendes Fleisch erinnert, angezogen werden, wie z. B. von der amerikanischen Papaya oder dem toten Pferdeapfel. Es besteht kaum ein Zweifel daran, dass diese Fliegen Nektar als Kohlenhydratquelle für den Flug nutzen, aber wie und wann dies geschieht, ist unbekannt. Eine Studie hat gezeigt, dass der visuelle Reiz, den die Schmeißfliege mit ihren Facettenaugen empfängt, dafür verantwortlich ist, dass sie ihre Beine aus der Flugposition ausfahren und auf einer beliebigen Oberfläche landen kann.

Die Larven der meisten Arten sind Aas- und Dungfresser und machen wahrscheinlich den größten Teil der in diesem Material gefundenen Maden aus, obwohl sie nicht selten in enger Verbindung mit anderen Zweiflüglerlarven aus den Familien Sarcophagidae und Muscidae sowie vielen anderen eichelhäutigen Bisamfliegen vorkommen.

Fressfeinde

Zu den Fressfeinden der Schmeißfliegen gehören Spinnen, Käfer, Frösche und Vögel, einschließlich Hühner.

Artenvielfalt

Es sind etwa 1 900 Arten von Schmeißfliegen bekannt, davon 120 Arten in der Neotropis und eine große Anzahl von Arten in Afrika und Südeuropa.

Die typischen Lebensräume für Schmeißfliegen sind gemäßigte bis tropische Gebiete, die eine Schicht aus lockerer, feuchter Erde und Streu bieten, in der die Larven gedeihen und sich verpuppen können.

Systematik

In Europa kommen über 100 Arten vor:

  • Angioneura acerba (Meigen 1838)
  • Angioneura cyrtoneurina (Zetterstedt 1859)
  • Angioneura fimbriata (Meigen 1826)
  • Bellardia bayeri (Jacentkovsky 1937)
  • Bellardia brevistylata (Villeneuve 1926)
  • Bellardia corsicana (Villeneuve 1911)
  • Bellardia grunini Schumann 1974
  • Bellardia kisha (Grunin 1970)
  • Bellardia obsoleta (Meigen 1824)
  • Bellardia pandia (Walker 1849)
  • Bellardia polita (Mik 1884)
  • Bellardia pruinosa (Enderlein 1933)
  • Bellardia pubicornis (Zetterstedt 1838)
  • Bellardia siciliensis (Villeneuve 1926)
  • Bellardia stricta (Villeneuve 1926)
  • Bellardia tatrica (Enderlein 1933)
  • Bellardia vespillo (Fabricius 1794)
  • Bellardia viarum (Robineau-Desvoidy 1830)
  • Bellardia vulgaris (Robineau-Desvoidy 1830)
  • Calliphora bezzi Zumpt 1956
  • Calliphora genarum (Zetterstedt 1838)
  • Calliphora loewi Enderlein 1903
  • Calliphora splendens Macquart 1839
  • Calliphora stelviana (Brauer & Bergenstamm 1891)
  • Calliphora stylifera (Pokorny 1889)
  • Calliphora subalpina (Ringdahl 1931)
  • Calliphora uralensis Villeneuve 1922
  • Calliphora vicina Robineau-Desvoidy 1830
  • Calliphora vomitoria (Linnaeus 1758)
  • Chrysomya albiceps (Wiedemann 1819)
  • Chrysomya chloropyga (Wiedemann 1818)
  • Chrysomya megacephala (Fabricius 1794)
  • Cosmina prasina (Brauer & Bergenstamm 1889)
  • Cynomya mortuorum (Linnaeus 1761)
  • Eggisops pecchiolii Rondani 1862
  • Eurychaeta muscaria (Meigen 1826)
  • Eurychaeta palpalis (Robineau-Desvoidy 1830)
  • Lucilia ampullacea Villeneuve 1922
  • Lucilia bufonivora Moniez 1876
  • Lucilia caesar (Linnaeus 1758)
  • Lucilia cuprina (Wiedemann 1830)
  • Lucilia illustris (Meigen 1826)
  • Lucilia magnicornis (Siebke 1863)
  • Lucilia pilosiventris Kramer 1910
  • Lucilia regalis (Meigen 1826)
  • Lucilia richardsi Collin 1926
  • Lucilia sericata (Meigen 1826)
  • Lucilia silvarum (Meigen 1826)
  • Melanomya nana (Meigen 1826)
  • Melinda gentilis Robineau-Desvoidy 1830
  • Melinda viridicyanea (Robineau-Desvoidy 1830)
  • Morinia doronici (Scopoli 1763)
  • Nesodexia corsicana Villeneuve 1911
  • Onesia austriaca Villeneuve 1920
  • Onesia canescens Villeneuve 1926
  • Onesia floralis Robineau-Desvoidy 1830
  • Onesia kowarzi Villeneuve 1920
  • Onesia zumpti Schumann 1964
  • Phormia regina (Meigen 1826)
  • Pollenia amentaria (Scopoli 1763)
  • Pollenia angustigena Wainwright 1940
  • Pollenia atramentaria (Meigen 1826)
  • Pollenia bezziana Rognes 1992
  • Pollenia bicolor Robineau-Desvoidy 1830
  • Pollenia bulgarica Jacentkovsky 1939
  • Pollenia contempta Robineau-Desvoidy 1863
  • Pollenia dasypoda Portschinsky 1881
  • Pollenia fulvipalpis Macquart 1835
  • Pollenia griseotomentosa (Jacentkovsky 1944)
  • Pollenia haeretica Seguy 1928
  • Pollenia hungarica Rognes 1987
  • Pollenia labialis Robineau-Desvoidy 1863
  • Pollenia leclercqiana (Lehrer 1978)
  • Pollenia luteovillosa Rognes 1987
  • Pollenia mayeri Jacentkovsky 1941
  • Pollenia mediterranea Grunin 1966
  • Pollenia moravica (Jacentkovsky 1941)
  • Pollenia paupera Rondani 1862
  • Pollenia pectinata Grunin 1966
  • Pollenia pediculata Macquart 1834
  • Pollenia ponti Rognes 1991
  • Pollenia pseudintermedia Rognes 1987
  • Pollenia rudis (Fabricius 1794)
  • Pollenia ruficrura Rondani 1862
  • Pollenia similis (Jacentkovsky 1941)
  • Pollenia tenuiforceps Seguy 1928
  • Pollenia vagabunda (Meigen 1826)
  • Pollenia venturii Zumpt 1956
  • Pollenia vera Jacentkovsky 1936
  • Pollenia verneri Rognes 1992
  • Pollenia viatica Robineau-Desvoidy 1830
  • Protocalliphora azurea (Fallen 1817)
  • Protocalliphora distincta Grunin 1966
  • Protocalliphora falcozi Seguy 1928
  • Protocalliphora isochroa Zumpt 1960
  • Protocalliphora lii Fan 1965
  • Protocalliphora nuortevai Grunin 1972
  • Protocalliphora peusi Gregor & Povolny 1959
  • Protocalliphora proxima Grunin 1966
  • Protocalliphora rognesi Thompson & Pont 1993
  • Protophormia atriceps (Zetterstedt 1845)
  • Protophormia terraenovae (Robineau-Desvoidy 1830)
  • Rhinia apicalis (Wiedemann 1830)
  • Rhyncomya columbina navarrica Gonzalez Mora & Peris 1988
  • Rhyncomya columbina (Meigen 1824)
  • Rhyncomya cuprea Bigot 1874
  • Rhyncomya cyanescens (Loew 1844)
  • Rhyncomya felina (Fabricius 1794)
  • Rhyncomya impavida (Rossi 1790)
  • Rhyncomya italica Bezzi 1911
  • Rhyncomya peusi Zumpt 1956
  • Rhyncomya speciosa (Loew 1844)
  • Rhyncomya zernyana Villeneuve 1926
  • Stomorhina lunata (Fabricius 1805)
  • Trypocalliphora braueri (Hendel 1901)
Nahaufnahme des Kopfes von Calliphora vomitoria
Ein Exemplar der Fliege Calliphora livida
Calliphora hilli
Calliphora augur
Eine Nahaufnahme des Kopfes einer Calliphora

Quellen: MYIA, FE, Nomina, A/O DC

Wirtschaftliche Bedeutung

Myiasis

Schmeißfliegen haben das Interesse von Forschern in einer Vielzahl von Bereichen geweckt, obwohl sich die umfangreiche Literatur über Schmeißfliegen auf die Lösung des Problems der Myiasis bei Nutztieren konzentriert. Die Schafschmeißfliege Lucilia cuprina verursacht in der australischen Schafzucht jährlich geschätzte Verluste in Höhe von 170 Millionen AU$.

Die häufigsten Verursacher von Myiasis bei Mensch und Tier sind die drei Dipterenfamilien Oestridae, Calliphoridae und Sarcophagidae. Myiasis beim Menschen wird klinisch in sechs Kategorien eingeteilt: dermal und subdermal, in der Gesichtshöhle, in Wunden oder Traumata, gastrointestinal, vaginal und generalisiert. Wenn die Dipterenlarven beim Menschen gefunden werden, befinden sie sich in der Regel in ihrem ersten Stadium. Die einzige notwendige Behandlung besteht darin, die Maden zu entfernen, und der Patient heilt auf natürliche Weise. Die Kongo-Bodenmaden gehören zwar nicht zu den Myiasis-Arten, ernähren sich aber von Säugetierblut, gelegentlich auch von menschlichem.

Spulwürmer

Der primäre Neuwelt-Schneckenwurm (Cochliomyia hominivorax), einst ein großer Schädling im Süden der Vereinigten Staaten, wurde in den Vereinigten Staaten, Mexiko und Mittelamerika durch ein umfangreiches Programm des USDA zur Freisetzung sterilisierter Männchen ausgerottet. Das USDA unterhält in der östlichen Hälfte der Republik Panama eine Produktionsstätte für sterile Schneckenfliegen und ein Freilassungsprogramm, um zu verhindern, dass fruchtbare Schnecken nach Norden wandern. Derzeit ist diese Art auf tropische Tieflandländer in Südamerika und einige karibische Inseln beschränkt.

Der Altwelt-Schneckenwurm (Chrysomya bezziana) ist ein obligater Parasit von Säugetieren. Diese Fliege ist in der gesamten Alten Welt verbreitet, einschließlich Südostasien, dem tropischen und subtropischen Afrika, einigen Ländern des Nahen Ostens, Indien, der Malaiischen Halbinsel, den indonesischen und philippinischen Inseln und Papua-Neuguinea.

Der sekundäre Schraubenwurm (Cochliomyia macellaria) ist zu einer der wichtigsten Arten geworden, auf die man sich bei der Schätzung von Post-mortem-Intervallen stützt, da seine Abfolge und sein Vorkommen auf verwesenden Überresten gut definiert sind. Der sekundäre Schraubenwurm ist in den gesamten Vereinigten Staaten und den amerikanischen Tropen sowie im südlichen Kanada während der Sommermonate anzutreffen. Diese Art ist eine der häufigsten Arten, die auf verwesenden Überresten im Süden der USA gefunden werden.

Maden-Therapie

Die Maden-Débridement-Therapie (MDT) ist die medizinische Verwendung ausgewählter, im Labor gezüchteter Fliegenlarven zur Reinigung nicht heilender Wunden. Medizinische Maden führen ein Debridement durch, indem sie selektiv nur totes Gewebe fressen. Lucilia sericata (Phaenicia sericata), die gewöhnliche grüne Flaschenfliege, ist die bevorzugte Art für die Madentherapie. Die MDT kann zur Behandlung von Druckgeschwüren, diabetischen Fußwunden, venösen Stauungsgeschwüren und postoperativen Wunden eingesetzt werden.

Krankheit

Die erwachsenen Tiere können Erreger von Krankheiten wie Dysenterie übertragen. Fliegen, vor allem Calliphoridae, wurden häufig mit der Übertragung von Krankheiten bei Mensch und Tier sowie mit Myiasis in Verbindung gebracht. Studien und Forschungsarbeiten haben Calliphora und Lucilia mit Überträgern von Erregern bakterieller Infektionen in Verbindung gebracht. Diese Larven, die häufig auf verwesenden Körpern zu finden sind, ernähren sich von Aas, während die erwachsenen Tiere entweder nekrophag oder vegetativ leben. Während des Verwesungsprozesses können Mikroorganismen (z. B. Mycobacterium) durch den Körper freigesetzt werden. Fliegen kommen am Ort des Geschehens an und legen ihre Eier ab. Die Larven beginnen, den Leichnam zu fressen und zu zersetzen, wobei sie gleichzeitig diese Organismen aufnehmen, was der erste Schritt eines Übertragungsweges ist.

Das Bakterium, das die Paratuberkulose bei Rindern, Schweinen und Vögeln auslöst (M. a. avium), wurde in verschiedenen Experimenten aus diesen Fliegen isoliert und wiedergefunden.

Weitere potenzielle und bedrohliche Krankheiten sind die hämorrhagische Kaninchenkrankheit in Neuseeland und der Fliegenstich. Obwohl der Fliegenstich nicht auf Schmeißfliegen beschränkt ist, sind diese Maden eine wichtige Quelle für diese Hautinvasion, die Läsionen verursacht, die, wenn sie schwer genug sind, tödlich sein können. Strike beginnt, wenn Schmeißfliegen ihre Eier in eine Wunde oder in fäkalienhaltiges Material auf dem Schaf legen. Wenn die Maden schlüpfen, beginnen sie, sich von den Schafen zu ernähren und sie dadurch zu reizen. Sobald die erste Welle von Maden geschlüpft ist, locken sie weitere Schmeißfliegen an und verursachen den Befall. Zur Vorbeugung gegen Schmeißfliegen stehen Insektizide zur Verfügung, und es können Vorsichtsmaßnahmen ergriffen werden, wie das Kupieren der Schwänze, das Scheren und die allgemeine Gesunderhaltung der Schafe.

Salmonellose wird nachweislich auch von der Schmeißfliege durch Speichel, Kot und direkten Kontakt mit den Tarsen der Fliegen übertragen. Ausgewachsene Fliegen können Krankheitserreger über ihre schwammartigen Mundwerkzeuge, Erbrochenes, den Darmtrakt, klebrige Fußballen oder sogar ihre Körper- oder Beinhaare verbreiten.

Da die Fliegen Überträger zahlreicher Krankheiten sind, wird es immer wichtiger, die übertragbaren Erreger, den Übertragungsweg sowie die Vorbeugung und Behandlung im Falle eines Kontakts zu ermitteln. Da die Fliege im Laufe ihres Lebens Hunderte von Eiern ablegen kann und sich Tausende von Larven gleichzeitig in unmittelbarer Nähe aufhalten, ist das Potenzial für eine Übertragung hoch, insbesondere bei idealen Temperaturen.

Forensische Bedeutung

Schmeißfliegen sind in der Regel die ersten Insekten, die mit Aas in Berührung kommen, da sie in der Lage sind, totes Tiermaterial aus einer Entfernung von bis zu 2 km zu riechen. Sobald sie das Aas erreichen, legen die Weibchen ihre Eier darauf ab. Da die Entwicklung sehr gut vorhersehbar ist, wenn die Umgebungstemperatur bekannt ist, gelten Schmeißfliegen als wertvolles Werkzeug in der Forensik. Schmeißfliegen werden in der Gerichtsmedizin eingesetzt, um das minimale Post-Mortem-Intervall (PMImin) bei menschlichen Leichen zu bestimmen. Herkömmliche Schätzungen der Zeit seit dem Tod sind nach 72 Stunden im Allgemeinen unzuverlässig, und oft sind Entomologen die einzigen Beamten, die in der Lage sind, ein genaues ungefähres Zeitintervall zu ermitteln. Die Spezialdisziplin, die sich mit dieser Praxis befasst, ist als forensische Entomologie bekannt.

Schmeißfliegen, die eine menschliche Leiche befallen haben, werden nicht nur zur Schätzung des PMImin verwendet, wenn man davon ausgeht, dass die Besiedlung nach dem Tod erfolgte, sondern auch, um festzustellen, ob die Leiche umgelagert wurde oder ob die Person vor dem Tod Betäubungsmittel zu sich genommen hat.

Calliphora vicina und Cynomya mortuorum sind wichtige Fliegen der forensischen Entomologie. Weitere forensisch wichtige Calliphoridae sind Phormia regina, Calliphora vomitoria, Calliphora livida, Lucilia cuprina, Lucilia sericata, Lucilia illustris, Chrysomya rufifacies, Chrysomya megacephala, Cochliomyia macellaria und Protophormia terraenovae. Ein Mythos besagt, dass Arten der Gattung Lucilia den Tod spüren können und kurz vor dessen Eintreten auftauchen.

Identifizierung

  • Fritz Konrad Ernst Zumpt Calliphorinae, in Lindner, E. Fliegen Palaearkt. Reg. 64i, 140 S. (1956)
  • Fan, C. T. Key to the common synanthropic flies of China. Peking [= Beijing]. xv + 330 S. Auf Chinesisch, aber mit wirklich hervorragenden Abbildungen. (1965).
  • Kano, R. und Shinonaga, S. Calliphoridae (Insecta: Diptera) (Fauna Japonica), Tokyo Biogeographical Society of Japan, Tokyo.( 1968). Auf Englisch.
  • Lehrer, A. Z., Diptera. Familie Calliphoridae. In: Fauna R.S.R., Insecta, Bd. XI,(12), Edit. R.S.R., Bucuresti, 1972, 245 S. In Rumänisch.
  • Rognes, K. Schmeißfliegen (Diptera: Calliphoridae) von Fennoskandien und Dänemark. Fauna Entomologica Scandinavica, Band 24. E. J. Brill/Scandinavian Science Press Ltd. Leiden.(1991).

Lebensweise

Schmeißfliegen auf frischem Hühnerkot

Die Schmeißfliegen sind vor allem an Blüten, meistens an Blütendolden, zu finden. Dabei können sie in beinahe allen Biotopen vorkommen. Sie ernähren sich von Nektar und Pollen und auch von Honigtau, wobei die Geschmacksorgane wie bei vielen Fliegen an den Fußgliedern zu finden sind. Zur Aufnahme von Säften suchen die Fliegen häufig zerfallene organische Stoffe auf und fliegen nach Aas riechende Blüten (etwa den Aronstab) oder Pilze (wie die Stinkmorchel (Phallus impudicus)) an. Bei der Stinkmorchel bewirkt der Duftstoff Phenylacetaldehyd die Anlockung. Die Fliegen fressen hier den Schleim des Pilzes, der auch dessen unverdauliche Sporen enthält, und sorgen so auch für die Verbreitung der Pilze.

Die Erkennung der Partnerin durch die Männchen erfolgt bei einigen Arten (etwa bei Protophormia terraenovae) dadurch, dass die Weibchen mit den Füßen ertastet und wahrscheinlich anhand der Geruchssensoren erkannt werden. Ist das Weibchen nicht paarungswillig, so wehrt es das Männchen durch Vibrieren der Flügel ab.

Entwicklung

Die bis zu mehrere hundert Eier enthaltenden Gelege werden auf organischen, meist proteinreichen Stoffen abgesetzt. Bei Legenot kann die Eientwicklung jedoch schon so weit fortgeschritten sein, dass während oder kurz nach der Eiablage die Larven (Maden) schlüpfen. Die Anlockung erfolgt dabei durch Geruchsstoffe, die bei der Verwesung und dem bakteriellen Abbau von Eiweiß entstehen, etwa Ethylmercaptan, Indol, Skatol, Ammoniumcarbonat und verschiedene Amine. Die Wahrnehmung dieser Stoffe erfolgt durch spezifische Geruchssinnesorgane an den Antennen der Fliegen, wobei verschiedene Arten durch verschiedene Gerüche angelockt werden. So wirkt Ethylmercaptan sehr stark auf Arten der Gattung Lucilia, dagegen kaum auf Calliphora-Arten. Ebenfalls wichtig ist die richtige Mischung der Geruchsstoffe, wobei einzelne Geruchsfaktoren je nach Konzentration anlockend, ein anderes Mal wiederum abstoßend wirken können. Aus diesem Grunde treffen unterschiedliche Arten der Schmeißfliegen zu unterschiedlichen Zeitpunkten an verwesenden Körpern ein und legen ihre Eier ab. Dieses Verhalten nutzt man etwa in der forensischen Entomologie, um den Todeszeitpunkt und die Liegedauer von Leichen zu bestimmen.

Die Larven atmen in den ersten Stadien über die Haut, ab dem dritten Stadium öffnen sich die vordersten und hintersten Stigmen des Tracheensystems. Sie stellen in der Körperform die klassischen kopflosen Maden dar. Schmeißfliegenmaden leben in und an pflanzlichen und tierischen Stoffen, die sich in Zersetzung befinden. Dazu gehören auch Leichen (Nekrophagie) und Exkremente (Koprophagie). Bei einigen Arten findet die Verdauung der Nahrung außerhalb des Körpers statt (exogene Verdauung), indem sie diese mit ihren Verdauungssäften vermischen und den angedauten Nahrungsbrei danach aufnehmen.

Unter den Schmeißfliegen finden sich neben diesen Arten auch solche, welche als Außen- oder Innenparasiten bei verschiedenen Wirbeltieren, auch beim Menschen, vorkommen. Diese leben entweder in offenen Wunden oder unter der Haut (Myiasis) der Wirte. In diese Gruppe gehören Vertreter der Gattungen Cordylobia (z. B. die Tumbufliege), Lucilia und Phormia, wobei die Larven von Lucilia sericata als Mittel der Wundheilung genutzt werden, da sie sehr spezifisch nekrotisches Gewebe fressen und auf diese Weise die Wunde sauber halten. Die Verpuppung der Schmeißfliegen findet meist am oder im Boden statt, man findet die Puppen einiger Arten jedoch auch in Nestern der Wirtstiere oder im gestorbenen Wirt.

Schadwirkung

Die Stoffwechselprodukte der Schmeißfliegenlarven sind für den menschlichen Organismus nicht gesund, und von ihnen einmal befallenes Fleisch ist nicht mehr für den menschlichen Verzehr geeignet. Bei ihren Besuchen auf den Lebensmitteln übertragen sie auch Mikroorganismen, die Eiweiß, Kohlenhydrate und Fette zersetzen. Diese Vektorleistung macht sie für den Menschen zu gefährlichen Schädlingen an Fleisch, Fisch und Milchprodukten.

Gattungen von Schmeißfliegen

Gattung Calliphora – Blaue Schmeißfliegen

Die Arten dieser Gattung sind die in Deutschland bekanntesten Vertreter der Schmeißfliegen. Hier kommen aus dieser Gattung fünf Arten vor, darunter C. vomitoria, C. vicina, C. loewi und C. subalpina. Sie erreichen Körpergrößen von 11 bis 14 mm. Die Eiablage erfolgt gewöhnlich auf Kadavern, aber auch in vielen anderen proteinreichen Substraten; sie werden daher auch als Blaue Fleischfliegen bezeichnet. Gelegentlich treten sie auch an Wunden bei Tieren und Menschen auf.

Gattung Cochliomyia

Neuwelt-Schraubenwurmfliege (Cochliomyia hominivorax)

Gattung Melinda

Bei diesen Fliegen, etwa M. caerulea, werden die Eier einzeln oder in maximal Dreiergruppen in die Mantelhöhle verschiedener Schnecken abgelegt. Die Larven sind Parasitoide in den Schnecken, das heißt, sie fressen die Schnecken aus und wachsen dabei heran. Kurz vor der Verpuppung stirbt der Wirt.

Gattung Protocalliphora – Vogelblutfliegen

Von den Vogelblutfliegen leben in Deutschland drei Arten, etwa P. falcozi. Die Larven dieser Fliegen leben in Vogelnestern und zapfen vor allem an den Jungvögeln Blut ab. Die Larven einiger Arten leben unter der Haut der Wirtstiere, für die der Befall manchmal tödlich sein kann.

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